Univerzální sekvenační knihovna TELL-Seq

Specifikace
- Název produktu: TELL-SeqTM Library Sequencing Kit
- Výrobce: Universal Sequencing Technology Corporation
- Kompatibilita: Všechny sekvenační systémy Illumina kromě iSeq 100
- Zamýšlené použití: Pouze pro výzkumné použití, ne pro diagnostické postupy
- Historie revizí: Verze 7.0, srpen 2024
Návod k použití produktu:
Zavedení
Knihovna TELL-SeqTM vyžaduje vlastní sekvenační primery pro jakýkoli sekvenační systém Illumina a obsahuje 18bázovou sekvenci indexu 1 používanou jako molekulární čárový kód pro propojená čtení, která musí být kompletně sekvenována.
Obsah sady
| Název součásti | Barva čepice | Koncentrace | Objem (µL) |
|---|---|---|---|
| Přečtěte si 1 Primer | ČEPICE černá | 100 mil | 50 |
| Přečtěte si 2 Primer | CAP Bílá | 100 mil | 50 |
| Index 1 Základní nátěr | ČEPICE červená | 100 mil | 50 |
| Index 2 Základní nátěr | ČEPICE Žlutá | 100 mil | 50 |
Struktura knihovny a schéma sekvenování TELL-SeqTM
- Index 1 (index I7) obsahuje 18bázové sekvence perliček TELL, které musí být kompletně sekvenovány.
- Index 2 (index I5) obsahuje sample indexové primerové sekvence používané v knihovně ampzvedání.
- Upřednostňuje se sekvenování párového konce s požadavkem na minimální délku čtení 2×96 a maximální požadavkem na délku čtení 2×150.
- Knihovny mohou být spojeny dohromady pro sekvenování, když jsou v knihovně použity různé multiplexní primery ampkrok liifikace.
Vlastní sekvenační primery
K sekvenování knihoven TELL-SeqTM jsou vyžadovány vlastní sekvenační primery a jsou poskytovány v sadě TELL-SeqTM Illumina Sequencing Primer Kit.
Custom Index 2 Primer
Vlastní primer Index 2 je potřeba, když je pro sekvenování spojeno více knihoven TELL-SeqTM s různými multiplexními primery a když sekvenátor vyžaduje sekvenační primer i5 index. V současné době, pouze pro MiSeq, není vyžadován vlastní Index 2 Primer.
Často kladené otázky (FAQ)
- Otázka: Lze soupravu TELL-SeqTM použít pro diagnostické postupy?
Odpověď: Ne, souprava TELL-SeqTM je určena pouze pro výzkumné použití a neměla by se používat pro diagnostické postupy. - Otázka: Jaký je požadavek na minimální a maximální délku čtení pro sekvenování párového konce?
Odpověď: Minimální požadavek na délku čtení je 2×96 a požadavek na maximální délku čtení je 2×150 pro sekvenování párovaných konců.
Uživatelská příručka pro sekvenování knihovny TELL-Seq™
Pro všechny sekvenační systémy Illumina@ kromě iSeq 100
Pouze pro výzkumné účely. Nepoužívat v diagnostických postupech.
Dokument č. 100018 v7.0
srpna 2024
Tento dokument je majetkem společnosti Universal Sequencing Technology Corporation a je určen výhradně pro použití jejím zákazníkem ve spojení s použitím zde popsaných produktů a pro žádné jiné účely.
Pokyny v tomto dokumentu musí přesně dodržovat řádně vyškolený personál, aby bylo zajištěno správné a bezpečné použití soupravy TELL-Seq™.
UNIVERZÁLNÍ SEKVENČNÍ TECHNOLOGIE NEPŘEBÍRÁ ŽÁDNOU ODPOVĚDNOST, KTERÁ VZNIKNE PO NESPRÁVNÉM POUŽITÍ SOUPRAVY TELL-SEQ™ KIT.
©2022 Universal Sequencing Technology Corporation. Všechna práva vyhrazena.
TELL-Seq™ je ochranná známka společnosti Universal Sequencing Technology Corporation. Všechny ostatní názvy, loga a další ochranné známky jsou majetkem příslušných vlastníků.
Historie revizí
| dokument č. | Verze | Odkaz a komentář DCR |
| C01K002 Rev. A | ledna 2020 | Počáteční vydání |
| C01K002 Rev. B | březen 2020 | Přidat dodatek |
| 100018-USG | 3.0 | Přidejte průvodce pro činidlo NovaSeq v1.5 |
| 100018-USG | 4.0 | Přidejte podrobné pokyny pro nejnovější NovaSeq
činidel |
| 100018-USG | 5.0 | Přidejte průvodce pro systém NextSeq 1000/2000 |
| 100018-USG | 6.0 | Přidejte informace o 96 multiplexních primerech (C-série). |
| 100018-USG | 7.0 | Přidejte 384 multiplexních primerů (C,D,E,F-série)
informace. Aktualizujte informace o primeru Index 2 |
Zavedení
Tento protokol vysvětluje, jak spustit libovolné indexované párové knihovny TELL-Seq™ na sekvenačním systému Illumina®.
Knihovna TELL-Seq™† vyžaduje vlastní sekvenační primery pro jakýkoli sekvenační systém Illumina a obsahuje sekvenci 18bázového indexu 1 používanou jako molekulární čárový kód pro propojená čtení, která musí být kompletně sekvenována.
Obsah sady
Sada TELL-Seq™ Illumina® Sequencing Primer Kit (PN 100004)

Sada TELL-Seq™ Illumina® Sequencing Primer Kit, HT (PN 100013)

Struktura knihovny a schéma sekvenování TELL-Seq™

Index 1 (tj. index I7) obsahuje sekvence TELL Bead o 18 bázích, které MUSÍ být kompletně sekvenovány. Index 2 (tj. index I5) obsahuje 8 bází (řada T) nebo 10 bází (řada C) sample indexové primerové sekvence používané v knihovně amplifikace. Výhodné je sekvenování párového konce. Minimální požadovaná délka čtení je 2×96; Maximální požadovaná délka čtení je 2×150.
Example of Illumina® Sequencing % Base by Cycle Chart

Pokyny pro sekvenování Illumina®
- Nařeďte knihovnu TELL-Seq™ podle koncentrace a objemu specifické pro sekvenační platformu Illumina®.
- Knihovny mohou být spojeny dohromady pro sekvenování, když jsou v knihovně použity různé multiplexní primery ampkrok liifikace.
- K sekvenování knihoven TELL-Seq™ jsou vyžadovány vlastní sekvenační primery, které jsou součástí sady TELL-Seq™ Illumina Sequencing Primer Kit.
- Tyto vlastní sekvenační primery lze vložit do specifikovaných jamek pro vlastní primery. Alternativně mohou být také vloženy do odpovídajících standardních jamek sekvenačního primeru Illumina®, když je kontrolní knihovna Illumina® PhiX obohacena v sekvenačním běhu.
- Custom Index 2 primer je potřeba pouze tehdy, když je pro sekvenování spojeno více knihoven TELL-Seq™ s různými multiplexními primery a když sekvenátor vyžaduje i5 index sekvenační primer. V současnosti pouze pro MiSeq, vlastní Index 2 Primer není vyžadován. Také pro nepodporované systémy, jako jsou činidla HiSeq 2000/2500 a NovaSeq v1, není vlastní primer Index 2 vyžadován.
- Minimální počet sekvenčních běhů lze provést s použitím množství poskytnutých sekvenačních primerů se mění v závislosti na sekvenačním systému.
| Sekvenční systém | Je vyžadován vlastní Index 2 Primer? |
| NovaSeq X/X Plus | Ano |
| NovaSeq 6000 | Ano |
| HiSeq 3000/4000 | Ano |
| DalšíSeq | Ano |
| MiSeq | Žádný |
| MiniSeq | Ano |
ExampTHEample List pro systém MiSeq
Níže je exampsamplist pro běh 2×146 PE s 18cyklovým indexem 1 (tj. index I7) a 8cyklovým nebo 10bázovým (C-series) indexem 2 (tj. indexem I5) sekvenováním pomocí vlastních sekvenačních primerů pro čtení 1 , Index 1 a Read 2, které budou vloženy do jamek vlastního sekvenačního primeru. Protože MiSeq používá primer P5 na povrchu průtokové cely jako sekvenační primer pro čtení Indexu 2, není pro systém MiSeq vyžadován vlastní primer TELL-Seq™ s indexem 2. Demultiplexování všech sdružených knihoven bude založeno na sample index (tj. index 2). Po dokončení sekvenování bude zpracována analytickým potrubím TELL-read samostatně.

Doporučení délky čtení sekvencí Illumina®
- Doporučuje se sekvenování párového konce.
- Knihovna TELL-Seq™ Index 1 má 18 bází, Index 2 je 8 bází (řada T) nebo 10 bází (řada C). U obou indexů je celkem 26 bází (řada T) nebo 28 bází (řada C) ve srovnání s celkovým počtem 16 bází standardního duálního indexu Illumina.
- Dalších 10 cyklů potřebných pro sekvenování indexu knihovny TELL-Seq™ je třeba odečíst od čtení 1 a 2 cyklů sekvenování rovnoměrně. Protože sekvenační činidlo Illumina zaručuje 2 cykly navíc, je třeba odečíst 4 cykly pro čtení 1 a 4 cykly pro čtení 2.
- Doporučená délka sekvenování je 2×96 PE až 2×146 PE pro běh s duálním indexem; 2×100 PE až 2×150 PE za jednu sekunduampspustit bez nutnosti čtení indexu 2.
Zvažování hloubky sekvenování
- Pro dostatečné pokrytí TELL Bead je vyžadována odpovídající hloubka sekvenování. Čím více korálků TELL se používá v knihovně ampPokud chcete vygenerovat knihovnu TELL-Seq™, tím více čtení sekvencí bude zapotřebí k získání požadované hloubky sekvenování. Čím méně TELL Beads se však používá pro knihovnu amplifikací, tím nižší bude složitost knihovny, což může vést k vyšší míře duplikace čtení sekvencí. Rovnováha mezi použitými kuličkami TELL Beads a požadovanou složitostí knihovny TELL-Seq™ může záviset na velikosti genomu a aplikaci.
- Pro aplikaci de novo sestavení, alespoň 60x pokrytí genomu sample se doporučuje obecně. V závislosti na množství TELL Beads použitých pro knihovnu však může stačit i nižší sekvenační pokrytí amplifikace a složitost knihovny TELL-Seq™.
- For human phasing, at least 500 million cluster reads per sample, což je ~40x hloubka je doporučena.
- Pro cílené sekvenování se doporučuje minimálně 100násobné pokrytí.
Knihovna Multiplexní sekvence indexu primeru (tj. čtení indexu 2): řada T (8 bází)
| Multiplex knihovny
Základní nátěr (série T) |
Pro Sample List MiSeq | Pro Sample Sheet NovaSeq,
NovaSeq X, NextSeq, MiniSeq |
| T501 | TGAACCTT | AAGGTTCA |
| T502 | TGCTAAGT | AKTTAGCA |
| T503 | TGTTCTCT | AGAGAACA |
| T504 | TAAGACAC | GTGTCTTA |
| T505 | CTAATCGA | TCGATTAG |
| T506 | CTAGAACA | TGTTCTAG |
| T507 | TAAGTTCC | GGAACTTA |
| T508 | TAGACCTA | TAGVOP |
| T509 | CATCCGAA | TTCGGATG |
| T510 | TTATGAGT | ACTCATAA |
| T511 | AGAGGCGC | GCGCCTCT |
| T512 | TAGCCGCG | CGCGGCTA |
| T513 | ACGAATAA | TTATTCGT |
| T514 | TTCGTAGG | CCTACGAA |
| T515 | GATCTGCT | AGCAGATC |
| T516 | CGCTCCGC | GCGGAGCG |
| T517 | AGGCTATA | TATAGCCT |
| T518 | GCCCTTAT | ATAGAGGC |
| T519 | AGGATAGG | CCTATCCT |
| T520 | TCAGAGCC | GGCTCTGA |
| T521 | CTTCGCCT | AGGCGAAG |
| T522 | TAAGATTA | TAATCTTA |
| T523 | AGTAAGTA | TAKTAKT |
| T524 | GACTTCCT | AGGAAGTC |
Knihovna Multiplexní sekvence indexu primeru (tj. čtení indexu 2): C,D,E,F-series (10-base)
| Library Multiplex Primer (série C) | Pro Sample List MiSeq | Pro Sample List NovaSeq, NovaSeq X, NextSeq, MiniSeq |
| C501 | ACGTACGTAC | GTACGTACGT |
| C502 | CATGCATGCA | TGCATGCATG |
| C503 | GTACGTACGT | ACGTACGTAC |
| C504 | TGCATGCATG | CATGCATGCA |
| C505 | ATGCTGATCA | TGATCAGCAT |
| C506 | CACAGCTGTG | CACAGCTGTG |
| C507 | GCTGATCAGC | GCTGATCAGC |
| C508 | TGATCAGCAT | ATGCTGATCA |
| C509 | ATTCAATACT | AGTATTGAAT |
| C510 | CTAGCGCTAG | CTAGCGCTAG |
| C511 | GCTAGTAGTA | TACTACTAGC |
| C512 | TCCAATCAAG | CTTGATTGGA |
| C513 | AATATTGCTG | CAGCAATATT |
| C514 | CGTCGTTACG | CGTAACGACG |
| C515 | GATTGATTCC | GGAATCAATC |
| C516 | TCTAACAATG | CATTGTTAGA |
| C517 | AGAATTGTCA | TGACAATTCT |
| C518 | CTCAGCAATT | AATTGCTGAG |
| C519 | GGTCCTTGTC | GACAAGGACC |
| C520 | AGGCCTGACA | TGTCAGGCCT |
| C521 | CTCCTAGTGG | CCACTAGGAG |
| C522 | GGTTACAGCT | AGCTGTAACC |
| C523 | CTGATTGGCG | CGCCAATCAG |
| C524 | ATTGGTTAGA | TCTAACCAAT |
| C525 | CCATTCAACT | AGTTGAATGG |
| C526 | CAGTATTGAC | GTCAATACTG |
| C527 | GAGTCCTCAA | TTGAGGACTC |
| C528 | AGCTACTACT | AGTAGTAGCT |
| C529 | TAGCTAGCGC | GCGCTAGCTA |
| C530 | GATGCAACAC | GTGTTGCATC |
| C531 | CCTCAGTACA | TGTACTGAGG |
| C532 | CGGTAATTCA | TGAATTACCG |
| C533 | CGCAATGGCT | AGCCATTGCG |
| C534 | GTACGTTGAA | TTCAACGTAC |
| C535 | TTGATCAGTA | TACTGATCAA |
| C536 | GGCCTAACAA | TTGTTAGGCC |
| C537 | GTTGTTGGAA | TTCCAACAAC |
| C538 | TACGTTGGAC | GTCCAACGTA |
| C539 | ACACCATGCA | TGCATGGTGT |
| C540 | GCAATAGTAC | GTACTATTGC |
| C541 | ACGCAGCCAG | CTGGCTGCGT |
| C542 | CGAGTTGACG | CGTCAACTCG |
| C543 | CGTGGCTGAA | TTCAGCCACG |
| C544 | TCTCAAGGAC | GTCCTTGAGA |
| C545 | CCTAGGCACT | AGTGCCTAGG |
| C546 | CTGCGGTAAT | ATTACCGCAG |
| C547 | GGCACTACCA | TGGTAGTGCC |
| C548 | GCTCAATCAA | TTGATTGAGC |
| C549 | AGGCACACAC | GTGTGTGCCT |
| C550 | CCTGGCAAGA | TCTTGCCAGG |
| C551 | TAATTGGTAG | CTACCAATTA |
| C552 | GCCAACAAGT | ACTTGTTGGC |
| C553 | ATGGCTTATA | TATAAGCCAT |
| C554 | GCATGGCCTT | AAGGCCATGC |
| C555 | ACAATACTGG | CCAGTATTGT |
| C556 | GGATTGGACT | AGTCCAATCC |
| C557 | ACTGTACTAT | ATAGTACAGT |
| C558 | CAGCTGTGAG | CTCACAGCTG |
| C559 | CTTGAGGACC | GGTCCTCAAG |
| C560 | GGTACAATAG | CTATTGTACC |
| C561 | CTGACTACTA | TAGTAGTCAG |
| C562 | TCAACCATGG | CCATGGTTGA |
| C563 | ATTATAACCG | CGGTTATAAT |
| C564 | ACTAGTCCTT | AAGGACTAGT |
| C565 | ACTTGGACGT | ACGTCCAAGT |
| C566 | ATGGTTAGGA | TCCTAACCAT |
| C567 | ATGGTACCAA | TTGGTACCAT |
| C568 | GAATTGACTC | GAGTCAATTC |
| C569 | AGCAACCAGG | CCTGGTTGCT |
| C570 | TACTGTGCTG | CAGCACAGTA |
| C571 | CAACAACGTC | GACGTTGTTG |
| C572 | CAGTAGCGCT | AGCGCTACTG |
| C573 | ATTACCAATC | GATTGGTAAT |
| C574 | TAAGGACCGC | GCGGTCCTTA |
| C575 | ACACGTACCG | CGGTACGTGT |
| C576 | CAACGTTGTT | AACAACGTTG |
| C577 | ATTGTGCTGA | TCAGCACAAT |
| C578 | GTACCAACAG | CTGTTGGTAC |
| C579 | TTGTCAAGGA | TCCTTGACAA |
| C580 | CTTGTACGTA | TACGTACAAG |
| C581 | TGCCCTGTAA | TTACAAGGCA |
| C582 | TAGTAGCTTA | TAAGCTACTA |
| C583 | GACCGCAATG | CATTGCGGTC |
| C584 | CTACTAGCTT | AAGCTAGTAG |
| C585 | AGCACACGTT | AACGTGTGCT |
| C586 | TGTTATAAGC | GCTTATAACA |
| C587 | GTTGCCAAGT | ACTTGGCAAC |
| C588 | CTGGCAACCG | CGGTTGCCAG |
| C589 | TTAGGCCTTA | TAAGGCCTAA |
| C590 | CGCAGCACAG | CTGTGCTGCG |
| C591 | CTAGGCACAA | TTGTGCCTAG |
| C592 | TGTTGTACAG | CTGTACAACA |
| C593 | CTAACGTGGC | GCCACGTTAG |
| C594 | GCGTACTGGT | ACCAGTACGC |
| C595 | GGCCTGAATT | AATTCAGGCC |
| C596 | CATGCTCGAG | CTCGAGCATG |
| Library Multiplex Primer (řada D) | Pro Sample List MiSeq | Pro Sample List NovaSeq, NovaSeq X, NextSeq, MiniSeq |
| D501 | AGCACTGTAA | TTACAGTGCT |
| D502 | CCGAAGTACT | AGTACTTCGG |
| D503 | GTTACAAGTA | TACTTGTAAC |
| D504 | TGATTGCGTG | CACGCAATCA |
| D505 | ATCTTAGGCA | TGCCTAAGAT |
| D506 | CACGCAAGTT | AACTTGCGTG |
| D507 | GAGCTTAGGA | TCCTAAGCTC |
| D508 | TATTGCTCGA | TCGAGCAATA |
| D509 | AACATCTGAG | CTCAGATGTT |
| D510 | CAACTCAGCA | TGCTGAGTTG |
| D511 | GAACTATATG | CATATAGTTC |
| D512 | TAATAGTCTA | TAGACTATTA |
| D513 | AAGATTGACG | CGTCAATCTT |
| D514 | CACGTAGCCG | CGGCTACGTG |
| D515 | GACTCGATCA | TGATCGAGTC |
| D516 | TAATCCTCGC | GCGAGGATTA |
| D517 | AAGCTCCTGG | CCAGGAGCTT |
| D518 | CAGATTGTTG | CAACAATCTG |
| D519 | GATGCTATTC | GAATAGCATC |
| D520 | TAATCCTCGC | GCGAGGATTA |
| D521 | AAGTATACCT | AGGTATACTT |
| D522 | CAGTAGCCAA | TTGGCTACTG |
| D523 | GCAAGGACTC | GAGTCCTTGC |
| D524 | TACTACTGTA | TACAGTAGTA |
| D525 | AATCCTAGCT | AGCTAGGATT |
| D526 | CATTGGCAAG | CTTGCCAATG |
| D527 | GCCTGAGAAT | ATTCTCAGGC |
| D528 | TACTAGCAAG | CTTGCTAGTA |
| D529 | ACAGCTAGTC | GACTAGCTGT |
| D530 | CCAACCAGTA | TACTGGTTGG |
| D531 | GCGCTCAATT | AATTGAGCGC |
| D532 | TAGCGCGGAC | GTCCGCGCTA |
| D533 | ACCTATAGTT | AACTATAGGT |
| D534 | CCACGTCAGG | CCTGACGTGG |
| D535 | GCTACGCAAT | ATTGCGTAGC |
| D536 | TAGTTGCTGC | GCAGCAACTA |
| D537 | ACGGTACAAC | GTTGTACCGT |
| D538 | CCGAACTTCG | CGAAGTTCGG |
| D539 | GCTCCTAATT | AATTAGGAGC |
| D540 | TATCCTCGAT | ATCGAGGATA |
| D541 | ACTCGATTCT | AGAATCGAGT |
| D542 | CCTGGTAATT | AATTACCAGG |
| D543 | GCTTAGTTGG | CCAACTAAGC |
| D544 | TCAGCAAGGA | TCCTTGCTGA |
| D545 | ACTGGTAGCA | TGCTACCAGT |
| D546 | CGATCAACCT | AGGTTGATCG |
| D547 | GGAAGTAGCA | TGCTACTTCC |
| D548 | TCAGCTGCGG | CCGCAGCTGA |
| D549 | ACTGGTAGCA | TGCTACCAGT |
| D550 | CGATCAACCT | AGGTTGATCG |
| D551 | GGCAAGATGA | TCATCTTGCC |
| D552 | TCCGCCAATG | CATTGGCGGA |
| D553 | AGAATCTTAT | ATAAGATTCT |
| D554 | CGCTAGCAAC | GTTGCTAGCG |
| D555 | GGCCTTATAT | ATATAAGGCC |
| D556 | TCGAATACTA | TAGTATTCGA |
| D557 | AGCAATGGTA | TACCATTGCT |
| D558 | CGGTCTGATC | GATCAGACCG |
| D559 | GGTCCGCCAT | ATGGCGGACC |
| D560 | TCGAATACTA | TAGTATTCGA |
| D561 | AGCACTGTAA | TTACAGTGCT |
| D562 | CGTACTACCG | CGGTAGTACG |
| D563 | GGTTCATCGG | CCGATGAACC |
| D564 | TCGGAGCTGC | GCAGCTCCGA |
| D565 | AGGACGTTAG | CTAACGTCCT |
| D566 | CGTTGACAAT | ATTGTCAACG |
| D567 | GTACTGACAC | GTGTCAGTAC |
| D568 | TCTAAGATAG | CTATCTTAGA |
| D569 | AGTGCTCAAC | GTTGAGCACT |
| D570 | CTAAGAACCT | AGGTTCTTAG |
| D571 | GTATAATTAC | GTAATTATAC |
| D572 | TGATTGCGTG | CACGCAATCA |
| D573 | ATATTCGACG | CGTCGAATAT |
| D574 | CTATAACGAC | GTCGTTATAG |
| D575 | GTCGTTAGGT | ACCTAACGAC |
| D576 | TGCCACTGAT | ATCAGTGGCA |
| D577 | ATCGGCTAAG | CTTAGCCGAT |
| D578 | CTCAAGTTGC | GCAACTTGAG |
| D579 | GTGTGTTCGA | TCGAACACAC |
| D580 | TGCTATAGTC | GACTATAGCA |
| D581 | ATGAGCTATT | AATAGCTCAT |
| D582 | CTCACAACGA | TCGTTGTGAG |
| D583 | TGCTCGATTG | CAATCGAGCA |
| D584 | ATGTTGGACT | AGTCCAACAT |
| D585 | CTGATGTTAG | CTAACATCAG |
| D586 | TGGTAACCAG | CTGGTTACCA |
| D587 | ATTCGAAGTA | TACTTCGAAT |
| D588 | CTTAGCTCCT | AGGAGCTAAG |
| D589 | TGTAATCGAT | ATCGATTACA |
| D590 | CTTGGACTTC | GAAGTCCAAG |
| D591 | TGTACTTGAA | TTCAAGTACA |
| D592 | TTAAGCTCAG | CTGAGCTTAA |
| D593 | TTACAACCAG | CTGGTTGTAA |
| D594 | TTCTCAGCCA | TGGCTGAGAA |
| D595 | TTGCATGGCT | AGCCATGCAA |
| D596 | TTGGCGGTAC | GTACCGCCAA |
| Library Multiplex Primer (řada E) | Pro Sample List MiSeq | Pro Sample List NovaSeq, NovaSeq X, NextSeq, MiniSeq |
| E501 | AGCCACGGTC | GACCGTGGCT |
| E502 | CCGCCTGAGT | ACTCGGCGG |
| E503 | GTATATACC | GGTATATAAC |
| E504 | CTTCCTGGCA | TGCCAGGAAG |
| E505 | ATCGAATTGC | GCAATTCGAT |
| E506 | CACGTGTTGT | ACAACACGTG |
| E507 | GAGCTGTGTT | AACACAGCTC |
| E508 | TATTACAGAT | ATCTGTAATA |
| E509 | AACAATGGCG | CGCCATTGTT |
| E510 | CAACTCGCTA | TAGCGAGTTG |
| E511 | GAATTGCTCA | TGAGCAATTC |
| E512 | GTGTGTTCGA | TCGAACACAC |
| E513 | CGATTCGAGC | GCTCGAATCG |
| E514 | GTCAACGTTA | TAACGTTGAC |
| E515 | GACAATCCTA | TAGGATTGTC |
| E516 | TAATCAGACT | AGTCTGATTA |
| E517 | AAGCTTATAT | ATATAAGCTT |
| E518 | CATATTGTAA | TTACAATATG |
| E519 | GATAGGACTT | AAGTCCTATC |
| E520 | ATGCTAGGTT | AACCTAGKOČKA |
| E521 | GCAAGATTAG | CTAATCTTGC |
| E522 | CAGCTGTATA | TATACAGCTG |
| E523 | GCAAGTCTAA | TTAGACTTGC |
| E524 | TACTAGCAAG | CTTGCTAGTA |
| E525 | AATACTGTTA | TAACAGTATT |
| E526 | CATATCTGAC | GTCAGATATG |
| E527 | GCCACTAAGG | CCTTAGTGGC |
| E528 | CTGGCAATTC | GAATTGCCAG |
| E529 | ACAATAGGCG | CGCCTATTGT |
| E530 | CCATGCTAAG | CTTAGCATGG |
| E531 | GCGAGCGATC | GATCGCTCGC |
| E532 | TAGGTAGTTC | GAACTACCTA |
| E533 | ACCTTGGACC | GGTCCAAGGT |
| E534 | TGACTAATAC | GTATTAGTCA |
| E535 | GCTATATCTG | CAGATATAGC |
| E536 | TCTAGTTCAG | CTGAACTAGA |
| E537 | ACGGTTGAGA | TCTCAACCGT |
| E538 | CTGATTCCGG | CCGGAATCAG |
| E539 | TGGTAACCAG | CTGGTTACCA |
| E540 | GACTCAGACA | TGTCTGAGTC |
| E541 | TTAGCCAATA | TATTGGCTAA |
| E542 | CCTTAAGGCG | CGCCTTAAGG |
| E543 | CGTAGCAATC | GATTGCTACG |
| E544 | CATGGCTAAT | ATTAGCCATG |
| E545 | ACTCGACAAT | ATTGTCGAGT |
| E546 | CGAGTCTAGG | CCTAGACTCG |
| E547 | GGACTCAGCT | AGCTGAGTCC |
| E548 | TCAGCAAGGA | TCCTTGCTGA |
| E549 | CGATTCCTTA | TAAGGAATCG |
| E550 | ATTAGGCAAT | ATTGCCTAAT |
| E551 | TTGTCGAAGG | CCTTCGACAA |
| E552 | TCCAAGTAGC | GCTACTTGGA |
| E553 | AGATAGTCCG | CGGACTATCT |
| E554 | CGCTAACATA | TATGTTAGCG |
| E555 | GGCTAATTGT | ACAATTAGCC |
| E556 | AGGTACGTCA | TGACGTACCT |
| E557 | TTCCAAGTTC | GAACTTGGAA |
| E558 | CGGAGCTCCG | CGGAGCTCCG |
| E559 | GGTACTAATA | TATTAGTACC |
| E560 | TCGAAGGCAA | TTGCCCTTCGA |
| E561 | CTCCTTGATG | CATCAAGGAG |
| E562 | GCAATTCCGG | CCGGAATTGC |
| E563 | ACTACGCAGC | GCTGCGTAGT |
| E564 | AGGAATGGCC | GGCCATTCCT |
| E565 | AGGTTAGKOČKA | ATGCTAACCT |
| E566 | CGTCCTAGAC | VOPTAGGACG |
| E567 | GCGTGGCAAT | ATTGCCACGC |
| E568 | TCTGATCGAC | GTCGATCAGA |
| E569 | AGTTGTCAGG | CCTGACAACT |
| E570 | CTACGCCAAT | ATTGGCGTAG |
| E571 | GTAGTTGCGT | ACGCAACTAC |
| E572 | TGAGCGCTAT | ATAGCGCTCA |
| E573 | ATACCTTAGT | ACTAAGGTAT |
| E574 | GCACACCATT | AATGGTGTGC |
| E575 | GTCTAAGGAG | CTCCTTAGAC |
| E576 | CATTCCGCGG | CCGCGGAATG |
| E577 | GCGTACCTAG | CTAGGTACGC |
| E578 | CTCAATAGCA | TGCTATTGAG |
| E579 | GTGCTAAGCC | GGCTTAGCAC |
| E580 | TGCCACTATC | GATAGTGGCA |
| E581 | GCTGTTGAAT | ATTCAACAGC |
| E582 | CGGCTAATCC | GGATTAGCCG |
| E583 | AACTACCGCA | TGCGGTAGTT |
| E584 | ATGCATCAAG | CTTGATGCAT |
| E585 | CTGACTTGCA | TGCAAGTCAG |
| E586 | TGGTACCTAT | ATAGGTACCA |
| E587 | ATTAGCTAAC | GTTAGCTAAT |
| E588 | TGGTACCTAT | ATAGGTACCA |
| E589 | TGTTGCTACC | GGTAGCAACA |
| E590 | CTTATATAAG | CTTATATAAG |
| E591 | TCAAGTCTGT | ACAGACTTGA |
| E592 | TGAGCGCTAT | ATAGCGCTCA |
| E593 | TTAGGCGTAC | GTACGCCTAA |
| E594 | TTCTCATCAG | CTGATGAGAA |
| E595 | CTAGGTATTG | CAATACCTAG |
| E596 | TTGCTGACTA | TAGTCAGCAA |
| Library Multiplex Primer (řada F) | Pro Sample List MiSeq | Pro Sample List NovaSeq, NovaSeq X, Next Seq, MiniSeq |
| F501 | AGCCAGTAGC | GCTACTGGCT |
| F502 | CCGATGAGTT | AACTCATCGG |
| F503 | GTTCAACTTC | GAAGTTGAAC |
| F504 | TTGAGCATCA | TGATGCTCAA |
| F505 | ATCAACAGTG | CACTGTTGAT |
| F506 | CACACGGTAG | CTACCGTGTG |
| F507 | GAGGATTGCT | AGCAATCCTC |
| F508 | TATCTTGGCC | GGCCAAGATA |
| F509 | AACTAGTGGC | GCCACTAGTT |
| F510 | CAATCCTGGT | ACCAGGATTG |
| F511 | GAAGGTTACG | CGTAACCTTC |
| F512 | CTAAGAACCT | AGGTTCTTAG |
| F513 | CACACGGTAG | CTACCGTGTG |
| F514 | AATTAGTCTG | CAGACTAATT |
| F515 | GACCGTGTTA | TAACACGGTC |
| F516 | TAATTCGAGG | CCTCGAATTA |
| F517 | AAGATTGACG | CGTCAATCTT |
| F518 | CAACTCGCTA | TAGCGAGTTG |
| F519 | GATTCGAACT | AGTTCGAATC |
| F520 | GCCTTGAGTT | AACTCAAGGC |
| F521 | CACAGATTAG | CTAATCTGTG |
| F522 | CAGCTAGGCC | GGCCTAGCTG |
| F523 | GCAAGGTATA | TATACCTTGC |
| F524 | TACCTAGGTA | TACCTAGGTA |
| F525 | AATCCTTGAA | TTCAAGGATT |
| F526 | CATCGAACCT | AGGTTCGATG |
| F527 | GCCTGCGTAA | TTACGCAGGC |
| F528 | CATCGAACCT | AGGTTCGATG |
| F529 | ACAGTGCCAT | ATGGCACTGT |
| F530 | CCAACTATTG | CAATAGTTGG |
| F531 | GCGTACCGCA | TGCGGTACGC |
| F532 | TAGGAGCGAT | ATCGCTCCTA |
| F533 | ACCAATTGGT | ACCAATTGGT |
| F534 | AATACTGTTA | TAACAGTATT |
| F535 | GCTGTTGAAT | ATTCAACAGC |
| F536 | TTACAACCAG | CTGGTTGTAA |
| F537 | ACGTCAAGTC | GACTTGACGT |
| F538 | CAATTCAATG | CATTGAATTG |
| F539 | TGAATTCAGC | GCTGAATTCA |
| F540 | ACGTACAGCT | AGCTGTACGT |
| F541 | TGACTACCAT | ATGGTAGTCA |
| F542 | CCTGGTGTGA | TCACACCAGG |
| F543 | GACTAATCGC | GCGATTAGTC |
| F544 | ACGTTAGTGC | GCACTAACGT |
| F545 | ACTCGATTCT | AGAATCGAGT |
| F546 | CGACAAGATT | AATCTTGTCG |
| F547 | GGAATTGGCT | AGCCAATTCC |
| F548 | TCACAGCCGA | TCGGCTGTGA |
| F549 | CTGTACTGTA | TACAGTACAG |
| F550 | TCGCTCGAGG | CCTCGAGCGA |
| F551 | ACCTTAGCAA | TTGCTAAGGT |
| F552 | TCCGGACTAC | GTAGTCCGGA |
| F553 | AGAACTTGCA | TGCAAGTTCT |
| F554 | CGCAGGACTT | AAGTCCTGCG |
| F555 | GGCAAGATGA | TCATCTTGCC |
| F556 | GCCTAGCGCG | CGCGCTAGGC |
| F557 | GACATCGCTA | TAGCGATGTC |
| F558 | CGGCTAATCC | GGATTAGCCG |
| F559 | GGTTGAGCTT | AAGCTCAACC |
| F560 | TCGCTCAGGC | GCCTGAGCGA |
| F561 | GCTGATTATA | TATAATCAGC |
| F562 | GCGCTAGTCC | GGACTAGCGC |
| F563 | TATGTCTGAA | TTCAGACATA |
| F564 | AAGCTTATAT | ATATAAGCTT |
| F565 | AGGAATGGCC | GGCCATTCCT |
| F566 | CGTAGCGCGC | GCGCGCTACG |
| F567 | GCCTGCGTAA | TTACGCAGGC |
| F568 | TCTTAGCGAT | ATCGCTAAGA |
| F569 | AGTTCTAAGA | TCTTAGAACT |
| F570 | CTAGGTATTG | CAATACCTAG |
| F571 | GTAGTACTAC | GTAGTACTAC |
| F572 | TGACAAGTAG | CTACTTGTCA |
| F573 | ATAGTCTGAG | CTCAGACTAT |
| F574 | CTGTGTTACA | TGTAACACAG |
| F575 | VOPTAGCCAC | GTGGCTAGAC |
| F576 | AATCAAGGTT | AACCTTGATT |
| F577 | KATAATTATG | KATAATTATG |
| F578 | CTCGAGCTAT | ATAGCTCGAG |
| F579 | GTGCCTGATG | CATCAGGCAC |
| F580 | TGCTCGATTG | CAATCGAGCA |
| F581 | GATTCGAACT | AGTTCGAATC |
| F582 | TCGTTGAGGA | TCCTCAACGA |
| F583 | AGCCAGGCGT | ACGCCTGGCT |
| F584 | ATGTCAGATT | AATCTGACAT |
| F585 | CTGTATATAC | GTATATACAG |
| F586 | TGGTGTCAAC | GTTGACACCA |
| F587 | ATTGCATGCT | AGCATGCAAT |
| F588 | AGTATTCATA | TATGAATACT |
| F589 | TGTAATTCCG | CGGAATTACA |
| F590 | CTTCCTGGCA | TGCCAGGAAG |
| F591 | TCCGCGCGGA | TCCGCGCGGA |
| F592 | CACTGTTCGG | CCGAACAGTG |
| F593 | TTAGCCAATA | TATTGGCTAA |
| F594 | TTCGAGCTGA | TCAGCTCGAA |
| F595 | GTACCGCGCG | CGCGCGGTAC |
| F596 | TTGAGCATCA | TGATGCTCAA |
Dodatek
Přidání vlastních primerů TELL-Seq™ do sekvenačních primerů Illumina®
Knihovny TELL-Seq™ vyžadují vlastní sekvenační primery pro sekvenační platformy Illumina. Při přidávání (nebo kombinování) vlastních sekvenačních primerů TELL-Seq™ Illumina do standardních sekvenačních primerů Illumina je nezbytné, když do sekvenačního běhu zahrnujete kontrolní knihovnu PhiX nebo jiné standardní knihovny Illumina s knihovnami TELL-Seq™.
Poznámka: Čtení indexu TELL-Seq™ 1 má 18 bází a vyžaduje 18cyklové sekvenování; Načtený index 2 má 8 bází pro primer řady T a 10 bází pro primer řady C.
Postup pro přidávání vlastních primerů do primerů Illumina
- Pozice kazety, celkové objemy a konečná koncentrace vlastních primerů pro každou platformu jsou uvedeny v tabulkách níže.
- Vypočítejte objem uživatelského primeru, který se má přidat k pozici kazety Illumina, na základě konečné koncentrace uživatelského primeru v kazetě.*
- Po přidání vlastního primeru upravte pipetu na polovinu celkového objemu a jemně pětkrát pipetujte nahoru a dolů, aby se důkladně promíchala.
- U platforem MiSeq, MiniSeq, NextSeq a NovaSeq nezaškrtávejte pozici políčka „custom primer“ v sample listu nebo během nastavování běhu.
* Chcete-li vypočítat, kolik vlastního primeru se má nastříkat do jamky, použijte rovnici (C1)*(V1) = (C2)*(V2), kde:
- C1 = 100 μM (při použití 100 μM vysoce koncentrovaného zásobního roztoku primeru je malý dodatečný objem ke konečnému objemu zanedbatelný).
- V1 = řešení pro objem vlastního základního nátěru, který má být přidán
- C2 = doporučená konečná koncentrace vlastního primeru z níže uvedené tabulky V2 = celkový objem primeru Illumina v tabulkách níže
Example pro platformu MiSeq
100 μM * V1 = 0.5 μM * 680 μL V1 = 3.4 μl
Důležitá poznámka: Níže uvedené pokyny jsou založeny na aktuálních objemech impulsů. Pro zajištění přesnosti změřte pomocí pipety celkové objemy primeru v kazetě, než budete pokračovat v nastavení.
Každý sekvenátor Illumina® má různou konečnou koncentraci a celkový objem, proto si přečtěte dokument níže, abyste zajistili, že se přímo přidá vhodné množství sekvenačních primerů TELL-Seq™ Illumina®.
*Poznámka: Index 1 a Index 2 spolu s primery Read 1 a Read 2 jsou často spojeny dohromady v jamce kazety s reagenciemi. Ujistěte se prosím, že konečná koncentrace vlastního primeru pro jamku odpovídá každému primeru (např. 0.3 μM indexu 1 a indexu 2 pro celkem 0.6 μM)
<https://knowledge.illumina.com/library-preparation/general/library-preparation-general-reference_material-list/000001542>
Níže jsou uvedeny
iSeq100
Vzhledem ke konstrukci kazety iSeq100 není možné vkládat a používat vlastní primery.
MiniSeq

DalšíSeq

MiSeq

* Neexistuje žádná možnost pro vlastní primer Index 2 (i5), protože šablona používá naroubovaný primer P5 na povrchu průtokové cely.
HiSeq 1000/2000 – 1500/2300 
* Neexistuje žádná možnost pro vlastní primer Index 2 (i5), protože šablona používá naroubovaný primer P5 na povrchu průtokové cely.
HiSeq 3000/4000

Spotřební materiál NovaSeq v1.0
| Verze stavebnice | Illumina Primer (jméno) | Poloha kazety | Celkový Objem (ml) | Zvyk základní nátěr konečné soustředění (µM) |
|
SP 100/200/300/500 cyklů |
Přečíst 1 (BP10) | 24 | 4 | 0.3 |
| Index 1 (i7) (BP14)* | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (BP11) | 13 | 2 | 0.3 | |
|
S1 a S2 100/200/300 cyklů |
Přečíst 1 (BP10) | 24 | 4 | 0.3 |
| Index 1 (i7) (BP14)* | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (BP11) | 13 | 2 | 0.3 | |
|
S4 200/300 cyklů |
Přečíst 1 (BP10) | 24 | 7.3 | 0.3 |
| Index 1 (i7) (BP14)* | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (BP11) | 13 | 3.5 | 0.3 |
* Neexistuje žádná možnost pro vlastní primer Index 2 (i5), protože šablona používá naroubovaný primer P5 na povrchu průtokové cely.
Spotřební materiál NovaSeq v1.5
| Verze stavebnice | Illumina Primer (název) | Poloha kazety | Celkový Objem (ml) | Zvyk základní nátěr konečné soustředění (µM) |
|
SP 100/200/300/500 cyklů |
Přečíst 1 (VP10) | 24 | 4 | 0.3 |
| Index 1 (i7) a Index 2 (i5) (VP14) | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (VP11) | 13 | 2 | 0.3 | |
|
S1 a S2 100/200/300 cyklů |
Přečíst 1 (VP10) | 24 | 4 | 0.3 |
| Index 1 (i7) a Index 2 (i5) (VP14) | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (VP11) | 13 | 2 | 0.3 | |
|
S4 200/300 cyklů |
Přečíst 1 (VP10) | 24 | 7.3 | 0.3 |
| Index 1 (i7) a Index 2 (i5) (VP14) | 23 | 5 | 0.3 | |
| Přečíst 2 (VP11) | 13 | 3.5 | 0.3 |
NovaSeq X/X Plus

Nastavení běhu TELL-Seq™ na systému NextSeq™ 1000/2000
Zásobník s reagenciemi NextSeq™ 1000/2000 má dvě vlastní jamky (1 a 2, obě jsou prázdné), které lze použít, když knihovna vyžaduje alespoň jeden vlastní primer. Podporuje až dva vlastní primery (pool) pro každou vlastní jamku. Je nezbytné, aby Read primer a Index primer byly v různých jamkách.

Knihovny TELL-Seq™ vyžadují vlastní primery pro všechna čtení (čtení 1, čtení 2, index 1 a index 2). Když jsou v běhu sekvenovány pouze knihovny TELL-Seq™
- Zkombinujte primery TELL-Seq™ read 1 a read 2: použijte HT1 k naředění každé vlastní čtené směsi primerů, abyste získali 600 µl při konečné koncentraci 0.3 µM, tj. 1.8 µl 100 µM TELL-Seq™ read 1 primeru a 1.8 µl 100 µM TELL-Seq™ odečtěte primer 2 do 597 ul HT1. Vložte jej do vlastní studny 1.
- Kombinujte primery TELL-Seq™ index 1 a index 2: použijte HT1 k naředění každé směsi primerů s vlastním indexem tak, abyste získali 600 µl při konečné koncentraci 0.6 µM, tj. 3.6 µl 100 µM primeru TELL-Seq™ index 1 a 3.6 µl 100 uM TELL-Seq™ index 2 primeru do 593 ul HT1. Vložte jej do vlastní studny 2.
- Při nastavování běhu sekvenování vyberte správný vlastní primer následovně:
- Přečtěte si 1: Vlastní 1
- Index 1: Vlastní 2
- Index 2: Vlastní 2
- Přečtěte si 2: Vlastní 1
Když jsou knihovny PhiX použity s knihovnami TELL-Seq™ pro sekvenování v běhu
- Získejte NextSeq 1000/2000 Read Primer Kit (katalogové č. 20046117)
Zkombinujte TELL-Seq™ read 1 a read 2 primery do HP21: Přidejte každou vlastní čtenou směs primerů do 600 µl HP21 pro konečnou koncentraci 0.3 µM, tj. 1.8 µl 100 µM TELL-Seq™ read 1 primeru a 1.8 µl 100 uM TELL-Seq™ odečtěte primer 2 do 597 ul HP21. Vložte jej do vlastní studny 1.- Kombinujte primery TELL-Seq™ index 1 a index 2: použijte HT1 k naředění každé směsi primerů s vlastním indexem tak, abyste získali 600 µl při konečné koncentraci 0.6 µM, tj. 3.6 µl 100 µM primeru TELL-Seq™ index 1 a 3.6 µl 100 uM TELL-Seq™ index 2 primeru do 593 ul HT1. Vložte jej do vlastní studny 2.
- Při nastavování běhu sekvenování vyberte správný vlastní primer, a to následovně:
- Přečtěte si 1: Vlastní 1
- Index 1: Vlastní 2
- Index 2: Vlastní 2
- Přečtěte si 2: Vlastní 1
Když jsou duální indexové knihovny Illumina sekvenovány s knihovnami TELL-Seq™ společně v běhu
- Získejte NextSeq 1000/2000 Read & Index Primer Kit (katalogové č. 20046115)

- Zkombinujte TELL-Seq™ read 1 a read 2 primery do HP21: Přidejte každou vlastní čtenou směs primerů do 600 µl HP21 pro konečnou koncentraci 0.3 µM, tj. 1.8 µl 100 µM TELL-Seq™ read 1 primeru a 1.8 µl 100 uM TELL-Seq™ odečtěte primer 2 do 597 ul HP21. Vložte jej do vlastní studny 1.
- Zkombinujte primery TELL-Seq™ index 1 a index 2 do BP14: Přidejte každou směs vlastních indexových primerů do 600 ul BP14 pro konečnou koncentraci 0.6 µM, tj. 3.6 µl 100 µM TELL-Seq™ indexu 1 primeru a 3.6 µl 100 uM TELL-Seq™ index 2 primeru do 593 ul BP14. Vložte jej do vlastní studny 2.
- Při nastavování běhu sekvenování vyberte správný vlastní primer, a to následovně:
- Přečtěte si 1: Vlastní 1
- Index 1: Vlastní 2
- Index 2: Vlastní 2
- Přečtěte si 2: Vlastní 1
Dokumenty / zdroje
![]() |
Univerzální sekvenační knihovna TELL-Seq [pdfUživatelská příručka TELL-Seq Library, TELL-Seq, Library |





